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路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法   0    0

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专利申请流程有哪些步骤?
专利申请流程图
申请
申请号:指国家知识产权局受理一件专利申请时给予该专利申请的一个标示号码。唯一性原则。
申请日:提出专利申请之日。
2015-05-12
申请公布
申请公布指发明专利申请经初步审查合格后,自申请日(或优先权日)起18个月期满时的公布或根据申请人的请求提前进行的公布。
申请公布号:专利申请过程中,在尚未取得专利授权之前,国家专利局《专利公报》公开专利时的编号。
申请公布日:申请公开的日期,即在专利公报上予以公开的日期。
2015-10-07
授权
授权指对发明专利申请经实质审查没有发现驳回理由,授予发明专利权;或对实用新型或外观设计专利申请经初步审查没有发现驳回理由,授予实用新型专利权或外观设计专利权。
2020-10-30
预估到期
发明专利权的期限为二十年,实用新型专利权期限为十年,外观设计专利权期限为十五年,均自申请日起计算。专利届满后法律终止保护。
2035-05-12
基本信息
有效性 有效专利 专利类型 发明专利
申请号 CN201510238524.9 申请日 2015-05-12
公开/公告号 CN104894200B 公开/公告日 2020-10-30
授权日 2020-10-30 预估到期日 2035-05-12
申请年 2015年 公开/公告年 2020年
缴费截止日
分类号 C12P21/06C07K1/20C07K1/16 主分类号 C12P21/06
是否联合申请 独立申请 文献类型号 B
独权数量 1 从权数量 0
权利要求数量 1 非专利引证数量 1
引用专利数量 1 被引证专利数量 0
非专利引证 1、2004.04.29李义平等.血管内皮细胞膜色谱模型的建立及初步应用《.科学通报》.2007,第52卷(第4期),;
引用专利 US2004081703A 被引证专利
专利权维持 7 专利申请国编码 CN
专利事件 事务标签 公开、实质审查、授权
申请人信息
申请人 第一申请人
专利权人 浙江海洋学院 当前专利权人 浙江海洋学院
发明人 王斌、迟长凤、赵玉勤、孙坤来 第一发明人 王斌
地址 浙江省舟山市定海区海院路18号 邮编
申请人数量 1 发明人数量 4
申请人所在省 浙江省 申请人所在市 浙江省舟山市
代理人信息
代理机构
专利代理机构是经省专利管理局审核,国家知识产权局批准设立,可以接受委托人的委托,在委托权限范围内以委托人的名义办理专利申请或其他专利事务的服务机构。
北京国翰知识产权代理事务所 代理人
专利代理师是代理他人进行专利申请和办理其他专利事务,取得一定资格的人。
徐佳晶
摘要
本发明涉及一种路氏双髻鲨血管生成抑制因子的制备方法。制备时经过路氏双髻鲨软骨匀浆,盐酸胍抽提,丙酮沉淀分级、酶解、凝胶过滤层析、细胞膜色谱纯化和高效液相色谱纯化,得Pro‑Asp‑Tyr‑Lys‑Phe‑Lys。该血管生成抑制因子能有效抑制鸡胚绒毛尿囊膜的血管生成,对荷Lewis肺癌小鼠肺癌组织的血管内皮细胞生长因子、碱性成纤维细胞生长因子和血小板衍生生长因子三种促血管生成因子的表达有明显的抑制作用。
  • 摘要附图
    路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法
  • 说明书附图:abs-1
    路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法
  • 说明书附图:图1
    路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法
  • 说明书附图:图2
    路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法
  • 说明书附图:图3
    路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法
  • 说明书附图:图4
    路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法
法律状态
序号 法律状态公告日 法律状态 法律状态信息
1 2020-10-30 授权
2 2015-10-07 实质审查的生效 IPC(主分类): C12P 21/06 专利申请号: 201510238524.9 申请日: 2015.05.12
3 2015-09-09 公开
权利要求
权利要求书是申请文件最核心的部分,是申请人向国家申请保护他的发明创造及划定保护范围的文件。
1.路氏双髻鲨血管生成抑制因子的制备方法,所述路氏双髻鲨血管生成抑制因子的氨基酸序列为Pro-Asp-Tyr-Lys-Phe-Lys,其制备方法包括以下步骤:
1)路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分的制备:将破碎匀浆的路氏双髻鲨软骨按固液比1g:8~10mL加入到1.0mol/L盐酸胍溶液中,4℃、振荡抽提32~36h后,于4℃、10000r/min离心15~20min,取上清液装入截留分子量为1kDa的透析袋中,利用pH 7.6的Tris-HCl缓冲液于4℃以下透析22~24h,得路氏双髻鲨软骨蛋白粗提液;路氏双髻鲨软骨蛋白粗提液置于4℃,缓慢加入4℃以下预冷的丙酮至丙酮浓度为30%,静置0.5~1h后,于4℃以下10000r/min离心15~25min,取上清液加入4℃以下预冷的丙酮至丙酮浓度达60%,静置0.5~1h后,4℃以下、10000r/min离心15~25min,取沉淀置于截留分子量为1kDa的透析袋内用双蒸水于4℃以下透析22~24h,透析液冷冻干燥,得路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分;
2)路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分的酶解:将路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分按固液比
1g:20~25mL加入浓度0.05mol/L、pH 9~10的Gly-NaOH缓冲液,得混合液;将混合液温度升至45~55℃预热5~10min,按照路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分质量的1.5~2.5%加入酶活力≥2.0×105U/g的碱性蛋白酶,酶解温度为45~55℃,酶解5~6h后,将溶液升温至90~95℃,并于此温度保持10~15min后,10000g离心20~25min,取上清液,即为软骨活性蛋白组分酶解产物;
3)路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备:将制备的软骨活性蛋白组分酶解产物采用1kDa超滤膜进行超滤处理,收集分子量小于1kDa部分,得超滤酶解液,再将酶解液依次经凝胶过滤层析、细胞膜色谱和反相高效液相色谱纯化,得到路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子;
其中,所述步骤3)的凝胶过滤层析、细胞膜色谱和反相高效液相色谱纯化的具体过程为:凝胶过滤层析:将上述超滤酶解液用pH 6.5~7.5磷酸盐缓冲液配成15~25mg/mL的溶液,经过葡聚糖凝胶G-15柱层析分离,用pH 6.5~7.5磷酸盐缓冲液进行洗脱,根据215nm下的吸光度曲线收集洗脱组分,其中,对鸡胚绒毛尿囊膜血管生成抑制作用最强组分为凝胶层析酶解物;
细胞膜色谱纯化:将上述凝胶层析酶解物用三蒸水配成40~50μg/mL的溶液,加入到细胞膜色谱柱进行纯化,根据215nm下的吸光度曲线收集洗脱组分,其中,对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用最强组分为细胞膜色谱纯化酶解物;所述细胞膜色谱柱中采用的细胞膜为人脐静脉血管内皮细胞株ECV304的细胞膜;所述细胞膜色谱条件为:进样量5~10μL;细胞膜色谱柱规格为150mm×4.6mm,5μm;柱温为37℃;流动相:三蒸水;紫外检测波长
215nm;流速:0.2mL/min;
反相高效液相色谱纯化:将上述细胞膜色谱纯化酶解物用三蒸水配成80~100μg/mL的溶液,利用RP-HPLC进行纯化,收集对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用最强的多肽,经检测为单一峰,利用蛋白/多肽序列分析仪测定氨基酸序列为Pro-Asp-Tyr-Lys-Phe-Lys(PDYKFK),ESI-MS检测分子量为796.90Da;所述RP-HPLC条件为:进样量15~20μL;色谱柱是规格为250mm×4.6mm、5μm的Zorbax C18;流动相为20%乙腈;紫外检测波长为215nm。
说明书

技术领域

[0002] 本发明涉及一种从水生生物的血管抑制因子的制备方法,尤其涉及一种路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法。

背景技术

[0003] 血管生成是肿瘤、糖尿病性视网膜病、风湿性关节炎和慢性炎症等血管增生性疾病的重要病理特征之一。而以抗血管生成为主的肿瘤生物治疗研究成为近十多年来抗肿瘤药物的研究热点。
[0004] 与以直接杀伤肿瘤细胞为目的的化学治疗相比,肿瘤血管生成抑制剂(Tumor angiogenesis inhibitor,TAI)具有以下独特优点:(1)TAI直接作用于血管内皮细胞,而抗癌药物经组织扩散时受到组织纤维化、坏死等的影响,经常在组织内达不到有效药物浓度;(2)相对于基因型不稳定肿瘤细胞,血管内皮细胞属正常细胞,基因型稳定,不易产生耐药性;(3)原发肿瘤和继发肿瘤的血管内皮细胞相同,而原发灶与继发灶中肿瘤细胞的生物学特性差异较大,化疗反应亦不同;(4)肿瘤血管内皮细胞的增殖速度比正常组织快许多倍,TAI对正常组织的影响轻微。基于以上原因,抗血管生成的肿瘤治疗策略将在今后肿瘤治疗中发挥重要的作用。
[0005] 申请人研究发现,以路氏双髻鲨软骨为原料,制备血管生成抑制因子的研究处于空白阶段,而路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子在制备抑制血管生成、防治肿瘤的药物中的应用更是未见报道。

发明内容

[0006] 本发明的目的尚在于提供一种操作方便、最终产品纯度高的路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法。
[0007] 本发明为解决上述技术问题所采取的技术方案为:一种路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备方法,其特征在于包括以下步骤:
[0008] 1)路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分的制备:将破碎匀浆的路氏双髻鲨软骨按固液比1 g:8~10 mL加入到1.0 mol/L盐酸胍溶液中,4 ℃、振荡抽提32~36 h后,于4 ℃、10 000 r/min离心15~20 min,取上清液装入截留分子量为1 kDa的透析袋中,利用Tris-HCl(pH 
7.6)缓冲液于4℃以下透析22~24 h,得路氏双髻鲨软骨蛋白粗提液;路氏双髻鲨软骨蛋白粗提液置于4 ℃,缓慢加入4 ℃以下预冷的丙酮至丙酮浓度为30%,静置0.5~1 h后,于4 ℃以下10 000 r/min离心15~25 min,取上清液加入4 ℃以下预冷的丙酮至丙酮浓度达
60%,静置0.5~1 h后,4 ℃以下、10 000 r/min离心15~25 min,取沉淀置于截留分子量为
1 kDa 的透析袋内用双蒸水于4 ℃以下透析22~24 h,透析液冷冻干燥,得路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分。
[0009] 2)路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分的酶解:将路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分按固液比1 g : 20~25 mL加入Gly-NaOH缓冲液(0.05 mol/L,pH 9~10),得混合液;将混合液温度升至45~55 ℃预热5~10 min,按照路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分质量的1.5~2.5%加入碱性蛋白酶(酶活力≥2.0×105 U/g),酶解温度为45~55 ℃,酶解5~6 h后,将溶液升温至90~95℃,并于此温度保持10~15 min后,10 000g离心20~25 min,取上清液,即为软骨活性蛋白组分酶解产物;
[0010] 3)路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备:将制备的软骨活性蛋白组分酶解产物采用1 kDa超滤膜进行超滤处理,收集分子量小于1 kDa部分,得超滤酶解液,再将酶解液依次经凝胶过滤层析、细胞膜色谱和反相高效液相色谱(RP-HPLC)纯化,得到路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子。
[0011] 作为优选,所述步骤1)中的路氏双髻鲨为路氏双髻鲨(Sphyrna lewini)。作为改进,所述步骤3)中的凝胶过滤层析、细胞膜色谱和RP-HPLC纯化的具体过程为:
[0012] 凝胶过滤层析:将上述超滤酶解液用pH 6.5~7.5磷酸盐缓冲液配成15~25 mg/mL的溶液,经过葡聚糖凝胶G-15柱层析(2.6 × 80 cm)分离,用pH 6.5~7.5磷酸盐缓冲液进行洗脱,根据215 nm下的吸光度曲线收集洗脱组分,其中,对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用最高组分为凝胶层析酶解物。
[0013] 细胞膜色谱纯化:将上述凝胶层析酶解物用三蒸水配成40~50 μg/mL的溶液,加入到细胞膜色谱柱进行纯化,根据215 nm下的吸光度曲线收集洗脱组分,其中,对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用最高组分为细胞膜色谱纯化酶解物。
[0014] RP-HPLC纯化:将上述细胞膜色谱纯化酶解物用三蒸水配成80~100 μg/mL的溶液,利用RP-HPLC进行纯化,根据对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用得1个高活性多肽Pro-Asp-Tyr-Lys-Phe-Lys(PDYKFK),ESI-MS检测分子量为796.90 Da。
[0015] 优选,所述细胞膜色谱条件为:进样量5~10 μL;细胞膜色谱柱(150 mm × 4.6mm,5 μm);柱温为37 ℃;流动相:三蒸水;紫外检测波长215 nm;流速:0.2 mL/min。
[0016] 优选,所述RP-HPLC条件为:进样量15~20 μL;色谱柱为Zorbax C18(250 mm × 4.6 mm,5 μm);流动相为20 %乙腈;紫外检测波长为215 nm。
[0017] 再优选,所述细胞膜色谱柱中采用的细胞膜为人脐静脉血管内皮细胞株ECV304的细胞膜。
[0018] 与现有技术相比,本发明的优点在于:提取、纯化工艺较先进,制得的血管生成抑制因子活性显著,可用于肿瘤疾病的防治。

实施方案

[0023] 以下结合附图实施例对本发明作进一步详细描述。
[0024] 实施例:
[0025] 一种路氏双髻鲨血管生成抑制因子的制备方法,制备流程如下:路氏双髻鲨软骨→组织破碎→盐酸胍抽提→丙酮分级沉淀→凝胶过滤层析纯化→细胞膜色谱纯化→高效液相色谱纯化→血管生成抑制因子。
[0026] 1)路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分的制备:将破碎匀浆的路氏双髻鲨(Sphyrna lewini)软骨按固液比1 g:10 mL加入到1.0 mol/L盐酸胍溶液中,4 ℃、振荡抽提36 h后,于4 ℃、10 000 r/min离心20 min,取上清液装入截留分子量为1 kDa的透析袋中,利用Tris-HCl(pH 7.6)缓冲液于4℃以下透析24 h,得路氏双髻鲨软骨蛋白粗提液;路氏双髻鲨软骨蛋白粗提液置于4 ℃,缓慢加入4 ℃以下预冷的丙酮至丙酮浓度为30%,静置1 h后,于4 ℃以下10 000 r/min离心25 min,取上清液加入4 ℃以下预冷的丙酮至丙酮浓度达60%,静置1 h后,4 ℃以下、10 000 r/min离心25 min,取沉淀置于截留分子量为1 kDa 的透析袋内用双蒸水于4 ℃以下透析24 h,透析液冷冻干燥,得路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分[0027] 2)路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分的酶解:将路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分按固液比1 g : 25 mL加入Gly-NaOH缓冲液(0.05 mol/L,pH 9~10),得混合液;将混合液温度升至45~55 ℃预热5 min,按照路氏双髻鲨软骨活性蛋白组分质量的1.8%加入碱性蛋白酶
5
(酶活力≥2.0×10 U/g),酶解温度为50 ℃,酶解5 h后,将溶液升温至95℃,并于此温度保持12 min后,10 000g离心25 min,取上清液,即为软骨活性蛋白组分酶解产物;
[0028] 3)路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子的制备:将制备的软骨活性蛋白组分酶解产物采用1 kDa超滤膜进行超滤处理,收集分子量小于1 kDa部分,得超滤酶解液,再将酶解液依次经凝胶过滤层析、细胞膜色谱和反相高效液相色谱(RP-HPLC)纯化,得到路氏双髻鲨软骨血管生成抑制因子。
[0029] ①凝胶过滤层析:将上述超滤酶解液用pH 7.0磷酸盐缓冲液配成25 mg/mL的溶液,经过葡聚糖凝胶G-15柱层析(2.6 × 80 cm)分离,用pH 7.0磷酸盐缓冲液进行洗脱,根据215 nm下的吸光度曲线收集洗脱组分,其中,对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用最强组分为凝胶层析酶解物Fr.C(图1)。
[0030] ②细胞膜色谱纯化:将上述凝胶层析酶解物Fr.C用三蒸水配成50 μg/mL的溶液,加入到细胞膜色谱柱进行纯化(条件:进样量50 μL;人脐静脉血管内皮细胞株ECV304的细胞膜柱(150 mm × 4.6mm,5 μm);柱温为37 ℃;流动相:三蒸水;紫外检测波长215 nm;流速:0.2 mL/min),其中,对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用最强组分为细胞膜色谱纯化酶解物Fr.C-II(图2)。
[0031] ③RP-HPLC纯化:将上述细胞膜色谱纯化酶解物Fr.C-II用三蒸水配成80~100 μg/mL的溶液,利用RP-HPLC进行纯化(条件:进样量15 μL;色谱柱为Zorbax C18(250 mm × 4.6 mm,5 μm);流动相为20 %乙腈;紫外检测波长为215 nm),根据对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用得1个高活性多肽。
[0032] ④结构检测:收集对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制作用最强的多肽,经检测为单一峰,利用蛋白/多肽序列分析仪测定氨基酸序列为Pro-Asp-Tyr-Lys-Phe-Lys(PDYKFK),ESI-MS检测分子量为796.90 Da。
[0033] 将制得的Pro-Asp-Tyr-Lys-Phe-Lys(PDYKFK)进行鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成抑制活性测定,测定方法参考贺国安、罗进贤、张添元等“改进的鸡胚绒毛尿囊膜技术-无气室孵育法”(记载于《中山大学学报(自然科学版)》,2003年第2册(第42卷): 第126-128页)。结果表明,路氏双髻鲨血管生成抑制因子PDYKFK显著抑制鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成并呈剂量依赖关系(表1)。
[0034] 表1 路氏双髻鲨血管生成抑制因子对鸡胚绒毛尿囊膜(CAM)血管生成的抑制作用[0035]
[0036] 将制得的PDYKFK进行促血管生成因子表达影响的测定,测定方法参考孙晓佳、张月英、贾青等“蝎毒多肽提取物联合化疗抑制Lewis肺癌血管生成实验研究”(记载于《中国中药杂志》,2011年第12期(第36卷):第1644-1649页)。给荷Lewis 肺癌小鼠腹腔注射路氏双髻鲨血管生成抑制因子PDYKFK (20.0mg/kg·d×14),取肺癌组织进行免疫组化检查,检测结果表明:路氏双髻鲨血管生成抑制因子PDYKFK对血管内皮细胞生长因子(VEGF) 、碱性成纤维细胞生长因子(bFGF) 和血小板衍生生长因子(PDGF) 等三种促血管生成因子的表达有明显的抑制作用(表2) 。
[0037] 表2 路氏双髻鲨血管生成抑制因子对促血管生成因子表达的抑制作用
[0038]
[0039] 尽管已结合优选的实施例描述了本发明,然其并非用以限定本发明,任何本领域技术人员,在不脱离本发明的精神和范围的情况下,能够对在这里列出的主题实施各种改变、同等物的置换和修改,因此本发明的保护范围当视所提出的权利要求限定的范围为准。

附图说明

[0019] 图1是本发明的超滤酶解液(≤1 kDa组分)的葡聚糖凝胶G-15柱层析色谱图;
[0020] 图2 是本发明的葡聚糖凝胶G-15制备酶解物(Fr.C)的细胞膜色谱图;
[0021] 图3是本发明的细胞膜色谱纯化酶解物(Fr.C-II)的RP-HPLC色谱图;
[0022] 图4是本发明制备步骤流程图。
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