[0032] 下面结合具体实施例对本发明做进一步的分析。
[0033] 实施例1:
[0034] (1)果汁饮料污染菌的培养及DNA模板提取:
[0035] 挑取平板培养基上长出的桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomyces cereviseae、酵母菌Dekera naardenensis、黑曲霉Aspergillus niger单菌落加入10mL成品苹果汁中,混匀,制成菌悬液;取1mL该菌悬液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul的50mMEDTA彻底重悬细胞;加入
120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取果汁饮料污染菌的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
[0036] (2)四重PCR扩增
[0037] 所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;(3)毛细管电泳分离条件
[0038] 分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
[0039] 使用贝克曼库尔使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果图1所示,在基因片段长度为160bp、192bp、201bp、247bp相应位置处均出现特征峰,故四种污染菌基因被检出,认为检测过程果汁对检测结果没有影响,使用本发明能够捕捉到样品中桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomyces cereviseae、酵母菌Dekera naardenensis、黑曲霉Aspergillus niger基因的特征峰。
[0040] 实施例2:
[0041] 取某果汁饮料厂生产车间500mL的果汁10瓶,使用孔径为0.45μm的滤膜分2次进行过滤,每次使用1片滤膜过滤250mL;对一片滤膜使用黑曲霉Aspergillus niger检测培养基察氏培养基在26℃,经7天厌氧培养后检测得到18个菌落,并以此作为实验对照;对另一片滤膜,使用1mL无菌水进行震荡洗涤,收集洗涤液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司GenomicDNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取果汁饮料污染菌的DNA模板。
[0042] 多重PCR反应体系使用Thermo-DNA Polymerase DNA试剂盒,使用3重PCR反应体系,所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCR缓冲液4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为
1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
[0043] 毛细管电泳分离条件:采用分离体系:1ul上述多重PCR扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min,使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,得到多重PCR-毛细管电泳谱图。结果如图2所示,在247bp相应位置处出现特征峰,则判断检测出黑曲霉Aspergillus niger,说明样品中含有具有果汁饮料污染能力的黑曲霉,且与对照培养实验结果相吻合。
[0044] 实施例3:
[0045] 乳酸菌(Lactobacillus)是果汁饮料中另一种常见污染菌。本实例可以证明本发明对桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomyces cereviseae、酵母菌Dekera naardenensis、黑曲霉Aspergillus niger的检测特异性,即本发明的检测方法在仅乳酸菌(Lactobacillus)存在情况下,未显示特征峰,即说明乳酸菌(Lactobacillus)存在不会对检测产生干扰。
[0046] 本实例再采用常见污染菌短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacillus coryniformi、植物乳杆菌Lactobacillus plantarum作为干扰菌。操作步骤如实施例1或2所述。
[0047] (1)污染菌的培养及DNA模板提取:
[0048] 分别挑取平板培养基上长出的短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacillus coryniformi、植物乳杆菌Lactobacillus plantarum单菌落加入10mL成品果汁中,混匀,制成菌悬液;取1mL该菌悬液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul的50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取污染菌的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
[0049] 所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;
70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
[0050] (3)毛细管电泳分离条件
[0051] 分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
[0052] 使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果显示,没有特征峰出现,即平板培养基上长出的短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacillus coryniformi、植物乳杆菌Lactobacillus plantarum的存在对检测结果均没有影响,不会出现假阳性结果。
[0053] 上述实施例并非是对于本发明的限制,本发明并非仅限于上述实施例,只要符合本发明要求,均属于本发明的保护范围。