[0031] 下面结合具体实施例对本发明做进一步的分析。
[0032] 实施例1:
[0033] (1)啤酒污染酵母菌的培养及DNA模板提取:
[0034] 挑取平板培养基上长出的啤酒污染酵母菌Pichia ermentans,Candida mesenterica,Hansenula polymorpha,Rhodotorula glutinis单菌落,按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取啤酒污染酵母菌的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
[0035] (2)四重PCR扩增
[0036] 所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;
70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
[0037] (3)毛细管电泳分离条件
[0038] 分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;
[0039] 分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
[0040] (4)数据分析
[0041] 使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果图1所示,4种污染酵母菌的基因均被检出,使用本发明在一次反应,能够捕捉到样品中4种污染酵母菌基因的特征峰。
[0042] 实施例2:
[0043] 啤酒的两大类,即爱尔(ale)啤酒和拉格(lager)啤酒,前者使用酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae),拉格啤酒发酵菌种为巴斯德酵母(Saccharomyces pastorianus),在酿酒过程的上游,以高浓度存在。本实例可以证明本发明对污染酵母菌Pichia fermentans,Candida mesenterica,Hansenula polymorpha,Rhodotorula glutinis的检测特异性,即本发明的检测方法在仅酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae)存在或巴斯德酵母(Saccharomyces pastorianus)存在情况下,未显示特征峰,2种非污染常用酵母菌(Saccharomyces cerevisiae和Saccharomyces pastorianus)存在不会对检测产生干扰。
[0044] 本发明的操作步骤如实施例1所述。
[0045] (1)啤酒污染菌的培养及DNA模板提取:
[0046] 挑取平板培养基上长出的酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae)存在和巴斯德酵母(Saccharomyces pastorianus)单菌落,按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取酿酒酵母菌和巴斯德酵母的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
[0047] (2)四重PCR扩增
[0048] 所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;
70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
[0049] (3)毛细管电泳分离条件
[0050] 分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;
[0051] 分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
[0052] (4)数据分析
[0053] 使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果显示,没有特征峰出现,即酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae)或巴斯德酵母(Saccharomyces pastorianus)的存在对检测结果没有影响,不会出现假阳性结果。
[0054] 实施例3:
[0055] 在酿酒过程的中,非污染发酵酵母菌(Saccharomyces cerevisiae和Saccharomyces pastorianus)发酵菌种以高浓度存在,污染酵母菌Pichia fermentans,Candida mesenterica,Hansenula polymorpha,Rhodotorula glutinis以低浓度存在。本实例可以证明本发明对微量的污染酵母菌和高浓度发酵菌种共存时,本发明对检测微量污染酵母菌的敏感性。
[0056] 本实例采用啤酒酿造的2种非污染常用酵母菌(Saccharomyces cerevisiae和Saccharomyces pastorianus),以10万倍:1的浓度比和污染酵母菌混合成样品,以检测本发明的灵敏性。
[0057] 分别挑取平板培养基上长出的酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae),和巴斯德酵母(Saccharomyces pastorianus)单菌落加入100mL培养基中,在有氧环境中培养至制成菌悬液,分光光度OD=0.2左右。污染酵母菌Pichia fermentans,Candida mesenterica,Hansenula polymorpha,Rhodotorula glutinis单菌落加入5mL培养基中,在有氧环境中培养至制成菌悬液,分光光度OD=0.2左右。根据OD值计算菌悬液浓度,以10万倍:1的浓度,将酿酒酵母菌或巴斯德酵母,和污染酵母菌混匀。取1mL该菌悬液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul的50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。
[0058] 之后按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取DNA模板,多重PCR反应体系使用Thermo-DNA Polymerase DNA试剂盒,使用4重PCR反应体系,所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCR缓冲液4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为
1个循环,共进行35个循环;4℃保温;毛细管电泳分离条件:采用分离体系:1ul上述多重PCR扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min,使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,得到多重PCR-毛细管电泳谱图,在与10万倍浓度的酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae),或巴斯德酵母(Saccharomyces pastorianus)共存情况下,能够检测出污染酵母菌Pichia fermentans,Candida mesenterica,Hansenula polymorpha,Rhodotorula glutinis基因的特征峰,结果显示,10万倍浓度的酿酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae)与Pichia fermentans混合,能够检测Pichia fermentans的基因特征峰,所示说明样品中含有大量非污染酵母菌,对检测污染酵母菌的灵敏度未造成干扰,并显示了高灵敏性。
[0059] 序列表
[0060]
[0061] 上述实施例并非是对于本发明的限制,本发明并非仅限于上述实施例,只要符合本发明要求,均属于本发明的保护范围。