[0034] 下面结合具体实施例对本发明做进一步的分析。
[0035] 实施例1:
[0036] (1)果汁饮料耐热菌的培养及DNA模板提取:
[0037] 挑取平板培养基上长出的酸土环脂芽孢杆菌(Alicyclobacillus acidoterrestris),球孢枝孢(Cladosporium sphaerospermum),腐败霉菌(Neosartoria fischeri),丝衣霉花(Byssochlamys spectabilis)单菌落加入10mL成品苹果汁中,混匀,制成菌悬液,取1mL该菌悬液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul的50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取果汁饮料耐热菌的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
[0038] (2)四重PCR扩增
[0039] 所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1~8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;
70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
[0040] (3)毛细管电泳分离条件
[0041] 分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
[0042] (4)数据分析
[0043] 使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果图1所示,四种耐热菌基因被检出,检测过程果汁对检测结果没有影响,使用本发明能够捕捉到样品中Alicyclobacillus acidoterrestris,Cladosporium sphaerospermum,Neosartoria fischeri,Byssochlamys spectabilis基因的特征峰。
[0044] 实施例2:
[0045] 取某果汁饮料厂生产车间500mL未高温消毒处理的果汁10瓶,使用孔径为0.45μm的滤膜分2次进行过滤,每次使用1片滤膜过滤250mL,对一片滤膜使用果汁饮料酸土环脂芽孢杆菌(Alicyclobacillus acidoterrestris)检测培养基MRS-琼脂在26℃,经7天厌氧培养后检测得到15个菌落,并以此作为实验对照;对另一片滤膜,使用1mL无菌水进行震荡洗涤,收集洗涤液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。
[0046] 之后按照Qiagen公司GenomicDNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取果汁饮料耐热菌的DNA模板,多重PCR反应体系使用Thermo-DNA Polymerase DNA试剂盒,使用多重PCR反应体系,所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCR缓冲液4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
[0047] 毛细管电泳分离条件:采用分离体系:1ul上述多重PCR扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min,使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,得到多重PCR-毛细管电泳谱图,结果如图2所示,检测出酸土环脂芽孢杆菌(Alicyclobacillus acidoterrestris)基因的特征峰,说明样品中含有具有果汁饮料污染能力的果汁饮料耐热菌酸土环脂芽孢杆菌,且与对照培养实验结果相吻合。
[0048] 实施例3:
[0049] 乳酸菌(Lactobacillus)是果汁饮料中另一种常见污染菌。本实例可以证明本发明对酸土环脂芽孢杆菌(Alicyclobacillus acidoterrestris),球孢枝孢(Cladosporium sphaerospermum),腐败霉菌(Neosartoria fischeri),丝衣霉花(Byssochlamys spectabilis)的检测特异性,即本发明的检测方法在仅乳酸菌(Lactobacillus)存在情况下,未显示特征峰,乳酸菌(Lactobacillus)存在不会对检测产生干扰。
[0050] 本实例采用常见耐热菌短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacillus coryniformi、植物乳杆菌Lactobacillus plantarum作为干扰菌。
[0051] 本发明的操作步骤如实施例1或2所述。
[0052] (1)污染菌的培养及DNA模板提取:
[0053] 分别挑取平板培养基上长出的短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacillus coryniformi、植物乳杆菌Lactobacillus plantarum单菌落加入10mL成品果汁中,混匀,制成菌悬液,取1mL该菌悬液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul的50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取果汁饮料耐热菌的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
[0054] (2)四重PCR扩增
[0055] 所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1~8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCR Buffer 4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;
70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
[0056] (3)毛细管电泳分离条件
[0057] 分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
[0058] (4)数据分析
[0059] 使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果显示,没有特征峰出现,即乳酸菌(Lactobacillus)的存在对检测结果没有影响,不会出现假阳性结果。
[0060] 上述实施例并非是对于本发明的限制,本发明并非仅限于上述实施例,只要符合本发明要求,均属于本发明的保护范围。